2010, Cilt 23, Sayı 1, Sayfa(lar) 022-029
[ Özet ] [ PDF ] [ Benzer Makaleler ] [ Yazara E-Posta ] [ Editöre E-Posta ]
SÜT SERUMU PROTEİNLERİNİN LİPOZOMLANMASI
A. Suha Yalçın1, Murat Türkoğlu2
1Marmara Universitesi Tıp Fakültesi, Biyokimya Anabilim Dalı, İstanbul, Türkiye
2Marmara Universitesi Eczacılık Fakültesi, Farmasötik Teknoloji Anabilim Dalı, İstanbul, Türkiye
Anahtar Kelimeler: Antioksidan aktivite, Jel kromatografisi, Lipozom, Süt serumu proteinleri
Özet
Amaç: Süt serumu proteinlerinin insan sağlığı üzerine birçok yararlı etkileri olduğu bilinmektedir. Çalışmamızda, peynir altı suyu tozundaki süt serumu proteinlerinin jel kromatografisiyle fraksiyonlara ayrılması ve antioksidan aktivite gösteren fraksiyonların lipozomlanarak bir kozmetik formülde kullanılması amaçlanmıştır.

Yöntemler: Peynir altı suyundaki süt serumu proteinlerinin fraksiyonlara ayrılması için ekstraksiyon, filtrasyon, santrifüjleme ve sıvı kromatografisi yöntemleri uygulandı. Elde edilen fraksiyonlarda antioksidan aktivite ölçümü bakır indirgeme kapasitesi ile yapıldı, proteinlerin analizi jel elektroforeziyle gerçekleştirildi. Lipozom eldesi için ince tabaka hidrasyon yöntemi kullanıldı.

Bulgular ve Sonuç: Ekstraksiyon, filtrasyon ve santrifüjleme gibi ön işlemlerden sonra Sephadex G-50 jel kromatografisinden yararlanılarak majör süt serumu proteinlerini içeren bir fraksiyon ile küçük molekül ağırlıklı peptidleri içeren ikinci bir fraksiyon elde edildi. Elde edilen fraksiyonlardan birincisinin en yüksek antioksidan aktiviteye sahip olduğu belirlendi. Daha sonra süt serumu proteinlerini içeren lipozomlar hazırlandı. Lipozomlarda boyut analizi yapıldı, ışık mikroskopu, elektron mikroskopu ve atomik kuvvet mikroskopu görüntüleri değerlendirildi. Son olarak, süt serumu proteinlerini içeren lipozomlar ile dermal kullanıma uygun bir jel elde edildi. Başta antioksidan aktivite olmak üzere çok sayıda biyolojik aktiviteye sahip olan süt serumu proteinlerinin lipozomlanmasının ve bu molekülleri içeren kozmetik formüllerin geliştirilmesinin dermal uygulamalar açısından önemli olduğunu düşünmekteyiz.

  • Başa Dön
  • Özet
  • Giriş
  • Materyal ve Metot
  • Bulgular
  • Tartışma
  • Kaynaklar
  • Giriş
    Sütün bileşiminde ana besin unsurlarının yanında metabolik olaylar için gerekli olan vitaminler, mineraller, enzimler ve proteinler de bulunmaktadır1. Sütün esas proteini olan kazein çöktürüldüğünde geriye kalan sıvı kısım peynir altı suyu, “whey” veya süt serumu adını almaktadır. Peynir üretimi sırasında yan ürün olarak elde edilen peynir altı suyu toz haline getirilerek gıda endüstrisinde değişik amaçlarla kullanılmakta ve peynir altı suyundaki çözünür proteinlerin çeşitli işlemlerle saflaştırılması sonrasında da protein içerikleri farklı olan ürünler elde edilmektedir2,3.

    Son yıllarda, süt serumu proteinlerinin insan sağlığı üzerine yararlı etkileri olduğu gösterilmiştir. Örneğin, süt serumu proteinlerinden elde edilen peptidlerin kan kolesterol seviyesini düşürücü etkileri bildirilmiş, laktoferrin ve glikomakropeptidler gibi proteinlerin antimikrobiyal aktivite gösterdikleri gözlenmiştir1,2,4. Yine süt serumundaki majör proteinlerden β-laktoglobulinin anti-hipertansif, anti-kanserojen, hipokolesterolemik, opioiderjik ve antimikrobiyal etkilere sahip olduğu bildirilmiş, α-laktalbümin ve ondan elde edilen peptidlerin ise stres azaltıcı, gevşetici ve uykuyu düzenleyici etkileri gözlenmiştir2,4. Minör proteinlerden laktoferrinin antiviral, antimikrobiyal, immünomodülatör, antioksidan aktivitelere sahip olduğu, laktoperoksidazın ise antibakteriyal aktiviteye gösterdiği bildirilmiştir5. Süt serumu proteinleri arasında yer alan büyüme faktörlerinin yararlı etkileri de ayrıca dikkat çekmektedir4.

    Sütün içerdiği antioksidanlar ile ilgili araştırma ve yayınların sayısı günden güne artmaktadır. Süt proteinlerinin ve hidrolizatlarının yüksek antioksidan aktiviteye sahip oldukları gösterilmiştir6-8. Çalışmamızda, peynir altı suyu tozundaki süt serumu proteinlerinin jel kromatografisiyle fraksiyonlara ayrılması, antioksidan aktivite gösteren fraksiyonların belirlenerek lipozomlanması ve bir kozmetik formülde kullanılması amaçlanmıştır.

  • Başa Dön
  • Özet
  • Giriş
  • Materyal ve Metot
  • Bulgular
  • Tartışma
  • Kaynaklar
  • Materyal ve Metot
    Peynir altı suyu tozu Sütaş A.Ş.’den, lipozom eldesinde kullanılan kimyasallardan dipalmitoilfosfatidilkolin (P5911) ve kolesterol (C3292) Sigma-Aldrich, kloroform Merck, soya lesitini (Epikuron 100 ve Epikuron 200SH) Cargill firmalarından temin edilmiştir.

    Peynir Altı Suyu Tozu Çözeltisinin Eldesi
    Dört adet santrifüj tüpü alındıktan ve her birinin boş ağırlığı not edildikten sonra içlerine 0.5 g peynir altı suyu tozu konuldu. Daha sonra tüplere 7.5 mL hekzan eklendi ve vorteks karıştırıcıyla yaklaşık beş dakika karıştırıldı. Tüpler 1,500 x g’de 10 dakika santrifüj edildi. Elde edilen süpernatanlar boş ağırlığı belirlenmiş bir kapta birleştirildi. Çökeltilerin üzerine tekrar hekzan eklenerek işlem 2 kez daha tekrarlandı. Süpernatanlar aynı kapta birleştirildi ve hekzan fazı olarak saklandı. Bu işlemlerden elde edilen çökeltiler bir süre bekletilerek hekzanın tamamen uçması sağlandı. Bütün tüplere 8 mL ultra saf su eklendi, vorteks karıştırıcıyla yaklaşık beş dakika karıştırıldıktan sonra tüpler 1,500 x g’de 10 dakika santrifüj edildi. Bu aşamada elde edilen tüm süpernatanların birleştirilmesiyle peynir altı suyu tozu çözeltisi elde edilmiş oldu.

    Sephadex G-50 Jel Filtrasyon Kromatografisi
    Peynir altı suyu tozundaki süt serumu proteinlerinin ayrımı Sephadex G-50 jel filtrasyon kromatografisi ile gerçekleştirildi. Bir gram Sephadex G-50 tartıldı ve üzerine 100 ml 0.02 M fosfat tamponu, pH 8.6 eklendi. Cam baget ile karıştırıldıktan sonra oda sıcaklığında 2 saat bekletildi. Bu şekilde şişirilen jel kolona döküldükten sonra dengelenmesi için kolon hacminin 2 katı kadar fosfat tamponu ile yıkandı. Daha sonra, yukarıda tarif edilen şekilde hazırlanan peynir altı suyu tozu çözeltisi 1.2 µm’lik şırınga filtreden geçirildi ve kromatografi kolonuna uygulandı. Elusyon işlemi fosfat tamponu ile yapıldı, akış hızı olarak 0.3 ml/dakika ayarlandı. Elde edilen fraksiyonların (~ 1 ml) 280 nm’deki absorbansları ölçüldükten sonra elüsyon grafiği çizildi.

    Poliakrilamid Jel Elektroforezi ile Protein Analizi
    Yükleme (% 4) ve ayırma jeli (% 18) olacak şekilde iki parçalı jel hazırlandı. Jel elektroforez düzeneğine döküldü ve polimerize olması beklendi. Taraklar yardımı ile yükleme jelinde örnek kuyucukları açıldı. Örnek olarak kromatografi işleminden elde edilen fraksiyonlar kullanıldı. Örnekler 1:1 oranında örnek tamponu ile karıştırıldı, 20 µl/ml olacak şekilde merkaptoetanol eklendikten sonra 1 saat oda sıcaklığında bekletildi. Daha sonra örnekler kaynar su banyosunda 4 dakika tutuldu ve 50’şer µl örnek jel içindeki kuyucuklara yüklendi. Elektroforez tankına 1.2 litre elektrot tamponu yerleştirildikten sonra elektrotlar bağlandı, sabit voltaj (200 V)’da 4-5 saatlik yürütme yapıldı. Sürenin sonunda yükleme ve ayırma jeli elektroforez düzeneğinden ayrıldı, bir gece boya çözeltisinde tutularak protein bantları görünür hale getirildi. Ertesi gün, jelin boya giderme çözeltisi ile yıkanmasıyla bağlanmayan boyanın akması ve protein bantlarının belirginleşmesi sağlandı.

    Antioksidan Aktivite Ölçümü
    Antioksidan aktivite ölçümü bakır iyonu indirgeme kapasitesine dayanan CUPRAC yöntemine göre yapıldı9. Bir deney tüpüne sırasıyla 200 µl 10 mM CuCl2 çözeltisi, 200 µl 7.5 mM neocuproine çözeltisi ve 200 µl 1 M amonyum asetat tamponu, pH 7.0 konuldu ve karıştırıldı. Daha sonra karışımın üzerine 20-200 µl örnek konuldu ve toplam hacim 820 µl olacak şekilde ultra saf su eklendi. Karışım oda sıcaklığında 30 dakika bekletildikten sonra 450 nm’deki absorbans değerleri ayıraç körüne karşı okundu. Aynı işlem standart olarak kullanılan 1 mM Trolox ile tekrarlandı ve sonuçlar mM Trolox cinsinden ifade edildi.

    Süt Serumu Proteinlerinin Lipozomlanması
    Sephadex G-50 jel kromatografisinden elde edilen fraksiyonlar ince-film hidratasyon yöntemiyle lipozomlandı10,11. Balon içine önce 50 mg fosfolipid ile 50 mg kolesterol konuldu ve 10 mL kloroform içinde çözüldü. Daha sonra çözeltideki kloroform 57-58 ºC’de vakum altında rota evaporatörde uçurularak lipit kalıntısı ince tabaka haline getirildi. Bu işlem yaklaşık 30 dakika sürdü. Elde edilen ince tabaka bir gece buzdolabında bekletilerek kloroformun tamamen uçması sağlandı. Ertesi gün lipit ince tabakası 10 mL örnek ile hidrate edildi. Lipit tabakasının tamamen çözülmesi için karıştırma işleminin elle veya vorteks karıştırıcıda yapılması, çözeltinin ultrasonik su banyosunda tutulması, karıştırma işleminde rota evaporatörden yararlanılması gibi farklı denemeler yapıldı. Lipit tabakası tamamen çözülünce işlem sonlandırıldı. Balon bir gece buzdolabında bekletilerek hidratasyon işleminin tamamlanması sağlandı.

    Lipozomlarda Yapılan İncelemeler
    Lipozomlarda şekil ve boyut değerlendirmesi başlangıçta Beckman Coulter HmX kan sayım cihazı ile yapıldı. Lipozomlarda tane boyut dağılımı tayini ile mikroskopik incelemeler TÜBİTAK-MAM Malzeme Enstitüsü’nde yaptırıldı. Elektron mikroskopisi ve atomik kuvvet mikroskopisi ile elde edilen görüntüler boyut analizi sonuçları ile karşılaştırıldı. Sephadex G-50 jel filtrasyon kromatografisinden elde edilen fraksiyonlar lipozomlandıktan sonra, yükleme işleminin gerçekleşip gerçekleşmediğinin belirlenmesinde jel filtrasyon kromatografisi ve poliakrilamid jel elektroforezinden yararlanıldı.

    Jel Eldesi
    Önce 0.5 g Carbopol Ultrez (Lot: EC 521212291) tartıldı ve yaklaşık 80 mL su içinde mekanik karıştırıcı yardımıyla (1,000 devir/dakika) dağıtıldı. Daha sonra süt serumu proteinlerini içeren lipozom çözeltisi (10 ml) eklendi. Son olarak, pH metre altında % 20’lik NaOH’den damla damla eklenerek pH 5.5-6 arasına getirilerek jel elde edildi.

  • Başa Dön
  • Özet
  • Giriş
  • Materyal ve Metot
  • Bulgular
  • Tartışma
  • Kaynaklar
  • Bulgular
    Sephadex G-50 Jel Filtrasyon Kromatografisi
    Şekil 1’de peynir altı suyu çözeltisinin ön işlemlerden sonra Sephadex G-50 kolonuna uygulanmasıyla elde edilen fraksiyonlar gösterilmiştir. Bu deneylerden elde edilen fraksiyonlar elektroforez ile incelendiğinde, birinci fraksiyonun ağırlıklı olarak immünoglobülinler (Ig), serum albümin (BSA), β-laktoglobulin (β-Lg) ve α-laktalbümin (α-La) içerdiği, ikinci fraksiyonda ise birinciden bir miktar karışmanın yanında küçük molekül ağırlıklı peptidlerin yer aldığı gözlenmiştir (Şekil 2).


    Büyütmek İçin Tıklayın
    Şekil 1: Peynir altı suyundan Sephadex G-50 jel filtrasyon kromatografisi ile elde edilen fraksiyonlar.
    Kolon boyutları: 2 x 26 cm; Örnek hacmi: 7-8 ml;
    Elüsyon: 0.02 M Fosfat tamponu, pH 8.6; Akış hızı: 1 ml/dakika


    Büyütmek İçin Tıklayın
    Şekil 2: Peynir altı suyundan elde edilen fraksiyonlarda poliakrilamid jel elektroforezi ile yapılan protein analizi sonuçları.
    1. F-1 fraksiyonu; 2. F-2 fraksiyonu; 3. Lipozomlanmış F-1 fraksiyonu (süpernatan);
    4 . Lipozomlanmış F-1 fraksiyonu (çökelti); 5. Lipozomlanmış F-2 fraksiyonu (süpernatan);
    6. Lipozomlanmış F-2 fraksiyonu (çökelti); 7. Boş lipozom, 8. Molekül ağırlığı belirteçleri

    Antioksidan Aktivite Ölçümü
    Sephadex G-50 jel filtrasyon kromatografisi ile elde edilen fraksiyonlarda yapılan antioksidan aktivite sonuçları Tablo I’de yer almaktadır. Protein miktarlarına göre düzeltme yapıldıktan sonra fraksiyonların aktiviteleri karşılaştırıldığında, en yüksek antioksidan aktiviteye sahip fraksiyonun F-1 olduğu (640 mmol TR/mg protein) belirlenmiştir.


    Büyütmek İçin Tıklayın
    Tablo I: Peynir altı suyundan elde edilen fraksiyonlarda antioksidan aktivite tayini

    Lipozom Eldesi ve Yapılan İncelemeler
    Yapılan yirmiden fazla ön denemeden sonra lipozom eldesi için standart bir yöntem oluşturuldu. Önce, rota evaporatörde kullanılacak balonun boyutları göz önüne alınarak dipalmitoilfosfatidilkolin veya soya lesitini (50-100 mg) ile kolesterol (50-100 mg) tartılarak kloroform (5-10 ml) içinde çözüldü. Balon içindeki çözelti rota evaporatörde (vakum altında ve 57ºC sıcaklıkta) 30 dakika tutularak kloroformun uzaklaştırılması ve balonun duvarında ince bir lipit tabakasının oluşması sağlandı. Kalıntı kloroformun tamamen uzaklaşmasını temin etmek için balon bir gece buzdolabında bekletildi. Ertesi gün aktif maddeyi içeren sulu faz ile, elde veya vorteks karıştırıcıda çalkalama ve sonikasyon şeklinde hidratasyon işlemi gerçekleştirildi. İşlemin oda sıcaklığında yapılmasının verimi arttırdığı gözlendi.

    Boyut dağılımı öncelikle hücre sayarı ile değerlendirildi. Lipozomların eldesi için kullanılan yöntemlerin boyut dağılımına etkisini incelemek üzere farklı por genişliğindeki (0.45 µm, 1.2 µm ve 5 µm) membran filtrelerden yararlanıldı. Filtrasyon sonrasında lipozom boyutlarının küçülerek homojen hale geldiği görüldü. Sonikasyon sonrasında da benzer bulgular elde edildi. Şekil 3’de çeşitli işlemlerden sonra ışık mikroskobuyla elde edilen lipozom görüntüleri yer almaktadır.


    Büyütmek İçin Tıklayın
    Şekil 3: Çeşitli işlemler görmüş lipozomların ışık mikroskobu görüntüleri.
    a. Hiçbir işlem görmemiş lipozomlar (40 x); b. Membran filtreden (0.45 µm) süzülmüş lipozomlar (40 x); c. Sonikasyon işleminden sonraki lipozom görüntüsü (40 x );
    d. Jel içindeki lipozom görüntüsü (100 x)

    Lipozom boyutları mikroskopik olarak değerlendirildiğinde lipozom boyutlarının 1-10 µm arasında değiştiği gözlendi. Lipozom yapımında kullanılan fosfolipitlerin yapısal farklılıklarının boyut dağılımına etkisi değerlendirildiğinde ise fosfolipit yapısının boyut dağılımını belirgin şekilde etkilediği gözlendi. En homojen dağılımın dipalmitoilfosfatidilkolin kullanılarak elde edildiği belirlendi.

    Süt serumu proteinlerinden elde edilen fraksiyonların lipozomlanmasından sonra fraksiyonların antioksidan aktivitelerini koruyup korumadıklarını belirlemek amacıyla lipozomlarda antioksidan aktivite ölçümleri yapıldı. Ancak lipozom yapısında yer alan fosfolipitlerin deney sistemiyle etkileşmesi nedeniyle olumlu sonuç elde edilemedi. Bu sorunun giderilebilmesi için başka antioksidan aktivite ölçüm yöntemlerinin denenmesi gerektiği sonucuna varıldı.

  • Başa Dön
  • Özet
  • Giriş
  • Materyal ve Metot
  • Bulgular
  • Tartışma
  • Kaynaklar
  • Tartışma
    Peynir altı suyu tozu, peynir üretimi sırasında sütten ayrılan sıvının toz haline getirilmiş şeklidir. Yüksek oranda çözünür protein içeren bu ürünün elde ediliş yöntemine ve kaynağına göre asit, tatlı, demineralize gibi çeşitleri ve farklı endüstriyel kullanım alanları vardır2,12. Peynir altı suyundaki süt serumu proteinlerini elde etmek amacıyla çöktürme, diyaliz, kromatografi, membran filtrasyonu, ultrafiltrasyon gibi farklı yöntemler kullanılmaktadır3,13. Kromatografi, peynir altı suyundaki süt serumu proteinlerini ayırmada sıkça kullanılan bir yöntemdir. Peynir altı suyundan katyon ve anyon değiştirici iyon değişim kromatografisi ile laktoperoksidaz, laktoferrin, α-laktalbümin, β-laktoglobulin B ve β-laktoglobulin A ayrı ayrı elde edilebilmiştir14. Çalışmamızda ekstraksiyon, filtrasyon ve santrifüjleme gibi ön işlemlerin ardından Sephadex G-50 jel kromatografisinden yararlanılarak, peynir altı suyundan iki ayrı fraksiyon elde edildi. Bunlardan birincisinin majör süt serumu proteinlerini, ikincisinin de küçük molekül ağırlıklı peptidleri içerdiği gözlendi.

    Majör süt serumu proteinlerinden β-laktoglobulin, gıda işlevselliği açısından değerli ve etkili bir proteindir. Uzun yıllar önemli bir gıda katkı maddesi olarak kullanılmıştır. Bu özelliğinin yanında antihipertansif, hipokolesterolemik, opioiderjik ve antimikrobiyal etkiler gibi birçok biyolojik aktiviteye sahiptir15,16. Sığır α-laktalbümini ise insan α-laktalbümini ile yüksek derecede aminoasit benzerliği göstermesi nedeniyle özellikle bebeklerin beslenmesine katkı sağlamaktadır15,16. Sığır α-laktalbümini ve ondan elde edilen peptidlerin biyolojik fonksiyonları arasında stres azaltıcı ve uyku düzenini iyileştirici etkiler yer almaktadır12,16. Son yıllarda yapılan araştırmalarda süt serumu proteinlerinin bağışıklık sisteminin güçlendirilmesi, desteklenmesi ve antioksidan savunma gibi etkilerinin ön plana çıktığı belirlenmiştir2,6,8,12,16.

    Öte yandan, lipozomların kozmetik amaçlı kullanımı giderek yaygınlaşmaktadır. Lipozomların taşıyıcı olarak sağladığı başlıca avantaj lipitlerin hidrate yapısının deride yaşlanmayla ortaya çıkan kuruluğu gidermesidir. Bunun yanında, lipozomlar aracılığıyla linolenik asit gibi bazı lipitlerin eksikliğinin giderilmesi mümkün olmaktadır. Ayrıca, lipozom yapımında doğal lipitlere ek olarak sentetik lipitlerin kullanılabilmesi stabilite avantajı sağlamaktadır. Non-iyonik surfaktanların kullanımıyla lipozomların hem yüksek miktarlarda hem de ucuza üretilebilmeleri sözkonusu olmuştur17.

    Son birkaç yılda ortaya çıkmış olan antioksidan lipozom tanımı, suda ve/veya yağda çözünen küçük moleküller ile antioksidan özellikteki enzim ve proteinleri içeren lipozomlar için kullanılmaktadır18. Antioksidan lipozomların oksidatif stres ile ilişkilendirilen pek çok hastalık ve durumun tedavisinde yararlı olabileceğine yönelik bulgular elde edilmiştir19-21. Yapılan araştırmalar antioksidan moleküllerin hardal gazının neden olduğu deri hasarlarına karşı da koruyucu etkileri olduğunu göstermiştir20.

    Süt serumu proteinlerinin yüksek sülfidril grubu içerikleri nedeniyle hem antioksidan aktivite gösterdikleri hem de başlıca endojen antioksidan molekül olan glutatyonun hücresel sentezini arttırdıkları bilinmektedir8,16. Bizim peynir altı suyu tozundan elde ettiğimiz birinci fraksiyon esas olarak α-laktalbümin ve β-laktoglobülinden oluştuğuna göre, bu fraksiyonu içeren lipozomların hücresel glutatyon sentezini arttırmada etkili olacağı düşünülebilir. Gerçekten de sıçanlarda yapılan deneysel çalışmalarda süt serumu proteinlerinin glutatyon sentezini ve yara iyileşmesini arttırdığı gözlenmiştir22,23.

    Sonuç olarak, süt serumu proteinlerinin fraksiyonlara ayrılarak lipozomlanmasının hem kozmetik formüllerin geliştirilmesi hem de topikal ve transdermal uygulamaların etkinliği açısından önemli bir katkı sağlayacağını düşünmekteyiz.

    Teşekkür
    Bu çalışma Marmara Üniversitesi Bilimsel Araştırma Projeleri Birimi tarafından SAG-YLS-14067-0109 no.lu proje ile desteklenmiştir.

  • Başa Dön
  • Özet
  • Giriş
  • Materyal ve Metot
  • Bulgular
  • Tartışma
  • Kaynaklar
  • Kaynaklar

    1) Jensen RG. Handbook of Milk Composition. San Diego, CA, Academic Press: 1995.

    2) Etzel MR. Manufacture and use of dairy protein fractions. J Nutr 2004; 134: 996S-1002S.

    3) Burr R. Protein purification from milk. In: Roe S, ed. Protein Purification Applications. Vol. 2. New York, Oxford University Press: 2001: 87-115.

    4) Fox PF, Flynn A. Biological properties of milk proteins. In: Fox PF, ed. Advanced Dairy Chemistry. Vol. 1. London, Elsevier: 1992: 255-284.

    5) Farnaud S, Evans RW. Lactoferrin- a multifunctional protein with antimicrobial properties. Mol Immunol 2003; 40: 395-405.

    6) Bayram T, Pekmez M, Arda N, Yalçın AS. Antioxidant activity of whey protein fractions isolated by gel exclusion chromatography and protease treatment. Talanta 2008; 75: 705-709.

    7) Lindmark-Mannson H, Akesson B. Antioxidative factors in milk. Br J Nutr 2000; 84: 103-110.

    8) Pihlanto A. Antioxidative peptides derived from milk proteins. Int Dairy J 2006; 16: 1306-1314.

    9) Apak R, Güçlü K, Özyürek M, Karademir SE, Erçağ E. The cupric ion reducing antioxidant capacity and polyphenolic content of some herbal teas. Int J Food Sci Nutr 2006; 57: 292-304.

    10) Gürsoy A, Akbuğa J. Stability of indomethacin-containing liposomes on long-term storage. J Controlled Release 1988; 8: 127-131.

    11) Mura P, Maestrelli F, Gonzalez-Rodriguez ML, Michelacci I, Ghelardini C, Rabasco AM. Development, characterization and in vivo evaluation of benzocaine-loaded liposomes. Eur J Pharmaceut Bioharmaceut 2007; 67: 86-95.

    12) Marshall K. Therapeutic applications of whey protein. Altern Med Review 2004; 9:136-156,

    13) Zydney AL. Protein separation using membrane filtration: New opportunities for whey fractionation. Int Dairy J 1998; 8: 243-250.

    14) Ye X, Yoshida S, Ng TB. Isolation of lactoperoxidase, lactoferrin, -lactalbumin, β-lactoglobulin B and β-lactoglobulin A from bovine rennet whey using ion exchange chromatography. Int J Biochem Cell Biol 2000; 32: 1143-1150.

    15) Chatterton DEW, Smithers G, Roupas P, Brodkorb A. Bioactivity of β-lactoglobulin and -lactalbumin-Technological implications for processing. Int Dairy J 2006; 16: 1229-1240.

    16) Yalçın AS. Emerging therapeutic potential of whey proteins and peptides. Curr Pharm Des 2006; 12: 1637-1643.

    17) Lasic DD. Applications of liposomes. In: Lipowsky R, Sackmann E, eds. Handbook of Biological Physics. Vol. 1. Elsevier Science BV. 1995: 491-519.

    18) Stone WL, Smith M.Therapeutic uses of antioxidant liposomes. Molec Biotech 2004; 27: 217-230.

    19) Hoesel LM, Flierl MA, Niederbichler AD, et al. Ability of antioxidant liposomes to prevent acute and progressive pulmonary injury. Antiox Redox Sign 2008; 10: 973-981.

    20) Paromov V, Suntres Z, Smith M, Stone WL. Sulfur mustard toxicity following dermal exposure- role of oxidative stress and antioxidant therapy. J Burns Wounds 2007; 7: 60-85.

    21) Sinha J, Das N, Basu MK. Liposomal antioxidants in combating ischemia-reperfusion injury in rat brain. Biomed Pharmacother 2001; 55: 264-271.

    22) Velioğlu-Öğünç A. Manukyan M, Cingi A, Aktan Ö, Yalçın AS. Süt serumu proteinleriyle beslenmenin sıçanlarda yara iyileşmesine etkisi, Kocatepe Tıp Dergisi, Ek Sayı: 2004; 51-54.

    23) Manukyan MN, Yavuz Y, Erbarut İ, et al. Sıçanlarda whey proteini ile oluşturulan glutatyon önkoşullandırmasının karaciğer sıcak iskemi-reperfüzyon hasarında hem oksijenaz 1 sistemi üzerine etkisi. Ulusal Cerrahi Dergisi 2008; 24: 137-144.

  • Başa Dön
  • Özet
  • Giriş
  • Materyal ve Metot
  • Bulgular
  • Tartışma
  • Kaynaklar
  • [ Başa Dön ] [ Özet ] [ PDF ] [ Benzer Makaleler ] [ Yazara E-Posta ] [ Editöre E-Posta ]